实验原理采用脂类染料（如苏丹黑或油红O）对血清脂蛋白进行预染处理，然后以琼脂糖凝胶板为介质进行电泳分离。电泳时，脂蛋白向正极移动，分离形成多个区域带。

Z6·尊龙凯时的实验流程包括如下试剂与器材：

1. 巴比缓冲液（pH 8.6，离子强度 0.075）：用于电极的缓冲液，配制方法为巴比/妥钠 154 g，巴比/妥 276 g，EDTA酸 0.292 g，加水溶解后定容至 1000 ml。
2. 三羟甲基氨基甲烷缓冲液（pH 8.6）：作为凝胶缓冲液，三甲基氨基甲烷 121.2 g，EDTA酸 0.29 g，NaCl 158.5 g，加水溶解后定容至 1000 ml。
3. 琼脂糖凝胶：045 g 琼脂糖，50 ml 三羟甲基氨基甲烷缓冲液，以及 50 ml 水，混合加热至沸腾，待完全溶解后停止加热。
4. 挖槽工具：切口刀的刀口长 15 mm，由有机玻璃或木片夹住，并用螺丝固定。挖槽小匙为直径 15 mm 的铜丝，长约 6 cm，一端锤平后用砂纸光滑打磨。
5. 电泳槽与电泳仪：与血清蛋白的电泳设备相同。

操作步骤如下：

1. 预染血清：将 0.2 ml 血清与 0.2 ml 苏丹黑染色液混合，置于 37℃水浴中染色 30 分钟后，进行离心（2000 转/分，约 5 分钟）。
2. 制备琼脂糖凝胶板：将准备好的 0.45% 琼脂糖凝胶在沸水中融化，借助吸管倒入载玻片中，每片 25 ml，静置约半小时至凝固（温度高时可放入冰箱加速凝固）。
3. 点加血清：在已凝固的琼脂糖凝胶板一端约 2 cm 处，用切口刀片垂直切入后取出，然后用铜丝小匙将小块凝胶去除。用滤纸吸干小槽中的水分，利用血色素吸管吸取经过预染的血清约 15 μl，注入小槽内。
4. 电泳：将加过血清的凝胶板平行放入电泳槽中，样品应在阴极一侧。浸润两块三层纱布于巴比/妥缓冲液，再轻轻贴合在凝胶板两端。纱布的另一端需浸于电泳槽内的巴比/妥缓冲液中（切忌使用三羟氨基缓冲液）。接通电源，电压设定在 120~130V，每片电流为 3~4 mA。经过 15 至 55 分钟后，即可观察分离的色带。

注意事项：

1. 样品应为新鲜的空腹血清。
2. 每块凝胶可平行挖两个小槽，以便加两个样品。
3. 可使用形状与小槽相同的有机玻璃片，在琼脂糖凝固前固定适当位置，凝固后取出，将形成的小槽用于加样，无需再挖槽。
4. 如需保存电泳样本，可将电泳后的凝胶板（连同玻片）浸泡于清水中脱盐 2 小时，再放入约 80℃的烘箱中烘干。

结果及临床意义：

1. 正常人血清脂蛋白可出现三条明显区带，依次为 β-脂蛋白（最深）、前 β-脂蛋白（最浅）、α-脂蛋白（略深于前 β-脂蛋白），在原点处通常无乳糜微粒。
2. 若前 β-脂蛋白深于 α-脂蛋白，伴随血清甘油三酯升高和胆固醇正常或略高，则可诊断为Ⅳ型高脂蛋白血症。
3. 若 β-脂蛋白区带明显加深，同时血清总胆固醇显著增高，甘油三酯正常，则为Ⅱa型；如总胆固醇增高且甘油三酯略高，前 β 溶解亦明显，则为Ⅱb型。
4. 若 β-和前 β-两区带无法分离，形成“宽 β 区带”，且血清甘油三酯和胆固醇均增高，则可定性为Ⅲ型。
5. 若观察到原点处有乳糜微粒，且 β、前 β 均正常或下降，血清甘油三酯显著升高，则可定为Ⅰ型。

Z6·尊龙凯时的产品仅供科研实验使用，切勿用于临床操作。